Pemeriksaan Kadar hCG Metode ELISA pada Serum suhu 4°C dan 25°C

Herlisa Anggraini, Erma Lestari, Aprilia Indra Kartika, Grevanmoy Febriani Kakiay, Prisca Audra Telleng

Abstract


Suhu serum pada uji ELISA merupakan faktor pra analitik yang dapat mempengaruhi kadar parameter yang diukur. Serum yang tidak diperiksa secara langsung akan disimpan pada suhu 4°C, sedangkan pemeriksaan ELISA menggunakan spesimen serum suhu ruangan (25°C). Masa tunggu suhu serum menjadi 4°C hingga 25°C seringkali tidak tepat sehingga pemeriksaan tetap dilakukan meskipun serum masih berada pada suhu 4°C. Untuk mengetahui perbedaan suhu serum pada suhu 4°C dan 25°C pada uji ELISA maka dilakukan penelitian dengan menggunakan parameter Human Chorionic Gonadrotopin (hCG). hCG adalah salah satu parameter untuk mendiagnosis kehamilan. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengidentifikasi apakah terdapat perbedaan kadar hCG serum pada suhu 4°C dan 25°C menggunakan metode ELISA. Sampel yang digunakan adalah ibu hamil trimester II sebanyak 10 orang yang akan diperiksa secara duplo. Masing masing 10 spesimen akan diperiksa kadar hCG menggunakan metode ELISA dalam kondisi suhu serum 4°C dan 25°C. Hasil penelitian menunjukkan bahwa rata-rata hCG serum yang diperiksa pada suhu 25°C (385.677 IU/L) lebih tinggi dibandingkan dengan serum pada suhu 4°C (381.912 IU/L), namun hasil statistik menunjukkan tidak terdapat perbedaan yang signifikan antara kadar HCG diperiksa pada suhu 4°C dan 25°C (p >0,05).

Keywords


Suhu serum pada uji ELISA merupakan faktor pra analitik yang dapat mempengaruhi kadar parameter yang diukur. Serum yang tidak diperiksa secara langsung akan disimpan pada suhu 4°C, sedangkan pemeriksaan ELISA menggunakan spesimen serum suhu ruangan (25°C)

Full Text:

PDF

References


Cruz, J., Cruz, G., Minekawa, R., Maiz, N., & Nicolaides, K. H. (2010). Effect of temperature on free β-human chorionic gonadotropin and pregnancy-associated plasma protein-A concentration. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology, 36(2), 141–146. https://doi.org/10.1002/uog.7688

Encarnação, J. C., Barta, P., Fornstedt, T., & Andersson, K. (2017). Impact of assay temperature on antibody binding characteristics in living cells : A case study. Biomedical Reports, 7, 400–406. https://doi.org/10.3892/br.2017.982

Fahisyah, R. N., Naim, N., & Armah, Z. (2019). Pengaruh Variasi Lama Penyimpanan Reagen Enzim 1a Terhadap Hasil Pemeriksaan Ureum Darah Metode Berthelot. Jurnal Media Analis Kesehatan, 10(1), 21. https://doi.org/10.32382/mak.v10i1.980

Flannery, J., Benzinger, M. J., Jr, Bird, P., Crowley, E. S., Goins, D., & Agin, J. R. (2016). Validation of the RIDASCREEN ® FAST Milk Kit. 495–503. Lahttps://doi.org/10.570/jaoacint.15-0290

Greene, D. N., Grenache, D. G., Committee, E., & Sam, C. M. E. (2015). Pathology Consultation on Human Chorionic Gonadotropin Testing for Pregnancy Assessment. (villi), 830–836. https://doi.org/10.1309/AJCP7O7VAREDUYIJ

Harti, A. S., Estuningsih, & Nurkusumawati, H. (2013). Pemeriksaan HCG (human chorionic gonadotropin) untuk deteksi kehamilan dini secara immunokromatografi. Jurnal Kesmadaska, 1(1), 1–4.

Hu, X., An, T., Situ, B., Hu, Y., Ou, Z., Li, Q., … Zheng, L. (2020). Heat inactivation of serum interferes with the immunoanalysis of antibodies to SARS-CoV-2. Wiley, 1–7. https://doi.org/10.1002/jcla.23411

Hu, X., Zhang, R., An, T., Li, Q., Situ, B., Ou, Z., … Zheng, L. (2020). Impact of heat-inactivation on the detection of SARS-CoV-2 IgM and IgG antibody by ELISA. Clinica Chimica Acta, 509, 288–292. https://doi.org/10.1016/j.cca.2020.06.032

Johnstone, R. W., Andrew, S. M., & Hogarth, M. P. (1990). The Effect Of Temperature On The Bındıng Kınetıcs And Equılıbrıum Constants Of Monoclonal Antıbodıes To Cell Surface Antıgens. Muolecular Immunology, 21(4), 327–333.

Jones, B. Y. F. S. (1927). The effect of heat on antibodies. 291–301.

Kalma. (2009). Pengaruh Suhu Inkubası Terhadap Tıter Aglutının O Dalam Serum Penderıta Demam Tıfoıd Menggunakan Ujı Wıdal Metode Tabung. Media Analis Kesehatan, 3(2), 51–58.

Kanji, J. N., Bailey, A., Fenton, J., Lindsay, L. R., Dibernardo, A., Pl, N., … Charlton, C. (2021). Stability of SARS-CoV-2 IgG in multiple laboratory conditions and blood sample types. Journal of Clinical Virology, 142(April), 104933. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2021.104933

Kongmalai, T., Chuanchaiyakul, N., Sripatumtong, C., Tansit, T., Srinoulprasert, Y., Klinsukon, N., & Thongtang, N. (2021). The effect of temperature on the stability of PCSK-9 monoclonal antibody : an experimental study. Lipids in Health and Disease, 3, 1–8.

Krepper, W., Satzer, P., Maria, B., & Jungbauer, A. (2018). Temperature dependence of antibody adsorption in protein A affinity chromatography. Journal of Chromatography A, 1551, 59–68. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2018.03.059

Kustiningsih, Y., Megawati, N., Kartiko, J. J., & Lutpiatina, L. (2017). Pengaruh Variasi Suhu Awal Reagen terhadap Kadar Glukosa Darah Metode Enzimatik. Medical Laboratory Technology Journal, 3(1), 27. https://doi.org/10.31964/mltj.v3i1.147

Lempiäinen, A., Hotakainen, K., Alfthan, H., & Stenman, U. H. (2012). Loss of human chorionic gonadotropin in urine during storage at -20°C. Clinica Chimica Acta, 413(1–2), 232–236. https://doi.org/10.1016/j.cca.2011.09.038

Lin, J., Dai, W., Li, W., Xiao, L., Luo, T., Guo, Y., … Xia, X. (2021). Potential False-Positive and False-Negative Results for COVID-19 IgG / IgM Antibody Testing After heat inactivation. Frontiers in Medicine, 7, 1–9. https://doi.org/10.3389/fmed.2020.589080

Ma, H., O’fagain, C., & Richard, O. (2020). Antibody stability : A key to performance - Analysis , influences and improvement. Biochimie, 177, 213–225. https://doi.org/10.1016/j.biochi.2020.08.019

Makalew, L. A., Hermanus, V. A., & Sunarti, N. M. (2013). Waktu Inkubasi Pemeriksaan WIDAL dan Antigen O Salmonella typhi dengan Metode Tabung. JIK, 8(1), 77–81.

Marfia, N., Iqbal, M., & Juliatia, P. (2018). Identifikasi Hormon HCG pada Tes Kehamilan. Jurnal Ipb, 1(1), 35–55.

Marliana, N., & Widhyasih, R. M. (2018). BAHAN AJAR TEKNOLOGI LABORATORIUM MEDIK (TLM) IMUNOSEROLOGI. In Pusat Pendidikan Sumber Daya Manusia Kesehatan Badan Pengembangan dan Pemberdayaan Sumber Daya Manusia Kesehatan.

Ng, A. H. C., Choi, K., Luoma, R. P., Robinson, J. M., Wheeler, A. R., Diagnostics, A., … States, U. (2012). Digital Micro fl uidic Magnetic Separation for Particle-Based Immunoassays.

Nwabuobi, C., Arlier, S., Schatz, F., Guzeloglu-Kayisli, O., Lockwood, C. J., & Kayisli, U. A. (2017). hCG: Biological functions and clinical applications. International Journal of Molecular Sciences, 18(10), 1–15. https://doi.org/10.3390/ijms18102037

Pastorino, B., Touret, F., Gilles, M., & Lamballerie, X. De. (2020). Samples : What Protocols for Biosafety ,. 6–13.

Puspa, K. D., Mursinah, & Budianto, R. R. (2013). Stabilitas Imunoglobulin M ( IgM ) Campak pada Dried Serum Spots. Jurnal Kefarmasian Indonesia, 3(2), 46–51.

Raehun, Jiwintarum, Y., & Pauzi, I. (2019). Pengaruh Waktu Penyimpanan Antisera Terhadap Daya Aglutinasi Metode Slide. Jurnal Analis Medika Bio Sains.

Siregar, M. T., Wulan, W. S., Setiawan, D., & Nuryati, A. (2018). Bahan Ajar Teknologı Laboratorıum Medık (Tlm) Kendalı Mutu. In Pusat Pendidikan Sumber Daya Manusia Kesehatan Badan Pengembangan dan Pemberdayaan Sumber Daya Manusia Kesehatan.

Stan, R. C., Francoso, K. S., Alves, R. P. S., Ferreira, L. C. S., Soares, I. S., & DeCamargo, Ma. M. (2019). Febrile temperatures increase in vitro antibody affinity for malarial and dengue antigens. Negleted Tropical Diseases, 1–10.

Suharlina, S., DIVAnalis Kesehatan, P., & Padang, Stik. (2018). Uji Kesesuaian Pemeriksaan Kehamilan Metode Strip Test Dengan Metode Aglutinasi. Prosiding Seminar Kesehatan Perintis E, 1(1), 2622–2256.

Telleng, P. A., Santosa, B., & Kartika, A. I. (2023). Comparison of HCG Levels in Reagents Temperature 25°C and 8°C Using ELISA Method. Medicra (Journal of Medical Laboratory Science/Technology), 6(1), 10–14. https://doi.org/10.21070/medicra.v6i1.1709

Woldesemayat, B., Gebremicael, G., Zealiyas, K., Yilma, A., & Adane, S. (2022). Effect of heat inactivation for the detection of severe acute respiratory syndrome ‑ corona virus ‑ 2 ( SARS ‑ CoV ‑ 2 ) with reverse transcription real time polymerase chain reaction ( rRT ‑ PCR ): evidence from Ethiopian study. 7, 1–9. https://doi.org/10.1186/s12879-022-07134-7

Xu, E., Li, T., Chen, Q., Wang, Z., & Xu, Y. (2021). Study on the Effect and Application Value of Heat-Inactivated Serum on the Detection of Thyroid Function , Tumor Markers , and Cytokines During the SARS-CoV-2 Pandemic. 8(October), 1–8. https://doi.org/10.3389/fmed.2021.742067

Xue, Y., Zhang, X., Zhou, C., Zhao, Y., Cowan, D. A., Heaphy, S., … Ventosa, A. (2006). a novel alkalithermophilic bacterium from a hot spring in China. 0, 1217–1221. https://doi.org/10.1099/ijs.0.64105-0

Zhou, H., Wang, C., Rao, J., Chen, L., Ma, T., Liu, D., … Xu, S. (2021). Biosafety and Health The impact of sample processing on the rapid antigen detection test for SARS-CoV-2 : Virus inactivation , VTM selection , and sample preservation. Biosafety and Health, 3(5), 238–243.https://doi.org/10.1016/j.bsheal.2021.09.001




DOI: https://doi.org/10.26630/jak.v12i2.4180

Refbacks

  • There are currently no refbacks.


Copyright (c) 2023 Aprilia Indra Kartika, Herlisa Anggraini, Erma Lestari, Grevanmoy Febriani Kakiay, Prisca Audra Telleng

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.

 
   
 
 
Published by: Jurusan Analis Kesehatan Poltekkes Kemenkes Tanjungkarang

Alamat: Jl. Brigjend. Soetiyoso No. 1 Kota Metro, Lampung, Indonesia

Phone: 0725-41819,E-mail: jurnal_ak@poltekkes-tjk.ac.id


Jurnal Analis Kesehatan is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.